Références :
- PRAT R., ANDRE J.P., MUTAFTSCHIEV S., and CATESSON A.M., 1996 -
Three-dimensional study of the intercellular gas space in Vigna radiata
hypocotyl. Protoplasma, 196 : 69-77.
- ANDRE J.P. (1993) Micromoulage des espaces vides intra- et inter
cellilaires dans les tissus végétaux. C.R.Acad. Sc.
Paris 316: 1336-1341
Pour avoir une idée précise de l'organisation spatiale
des méats aérifères, une technique d'infiltration
par un élastomère a été mise au point par
l'un d'entre nous (J.P. André).
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Schématisation simple
de la technique employée :
- Les échantillons vivants sont placés
dans une enceinte hermétique (cloche à vide) dans
l'élastomère de silicone liquide.
- Un vide poussé est réalisé
jusqu'à ce que l'ensemble des gaz contenus dans les échantillons
soient évacués (dégazage).
- Le vide est alors cassé : la solution
externe (l'élastomère) pénètre dans
les espaces libérés par les gaz.
- On provoque alors le durcissement de l'élastomère
(réticulation effectuée à la température
ambiante).
- L'ensemble des tissus biologiques est alors
détruit par de l'acide sulfurique concentré (72%)
et del'hypochlorite de sodium.
- Il ne reste plus que le "fantôme"
de l'élastomère représentant le moulage de
l'espace gazeux.
- Celui-ci peut être observé en coloration
négative ou en microscopie électronique à
balayage.
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Si les espaces gazeux ont une forme et un volume non variable, le moulage
par l'élastomère rend compte très exactement du
volume de cet espace. D'autre part, les relations entre les différentes
parties du réseau sont parfaitement respectées. Par contre,
l'élastomère employé est élastique. Le réseau
mis en évidence s'affaisse sous l'effet de la pesanteur et paraît
plus dense qu'en réalité. D'autres auteurs ont utilisé
des polymères rigides qui pouvaient mieux conserver l'aspect
spatial général mais ces polymères étant
cassants, ils ne permettaient pas d'avoir une vue globale du réseau.
La visualisation du moulage de l'espace gazeux peut être réalisée
de deux manières :
- en microscopie photonique : le moulage est observé dans une
solution colorée ou dans une suspension d'encre de chine (coloration
négative),
- en microscopie électronique à balayage.
Observation en microscopie photonique
: le moulage est observé dans une suspension d'encre de
chine (coloration négative).
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Portion d'un moulage.
Ce détail représente à
droite l'ensemble des méats entourant une cellule de parenchyme
cortical et à gauche une figure typique fréquemment
observée montrant l'irrégularité du réseau.
Des doubles méats reliés entre eux (structures épaisses
en forme d'oeufs de raie) et des communications plus fines avec d'autres
méats. |
Portion d'un moulage.
Ce détail représente l'ensemble
des méats au niveau de la jonction de deux cellules de parenchyme
cortical. On remarque la complexité du réseau gazeux. |
Observation en microscopie électronique
à balayage
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Vue générale
d'une portion du réseau d'élastomère après
durcissement et destruction des tissus biologiques. |
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Un détail du
moulage du réseau aérifère. On
peut imaginer entre les méats, la position et la forme
qu'avaient les cellules avant leur destruction. |
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Détail. Certains
canaux présentent une section triangulaire, comme le laissait
présager la forme des méats observés avec les
techniques classiques de la microscopie. |
Agrandissement
d'une portion d'un canalicule de l'espace gazeux. Le
moulage de cet espace montre le réseau interne de la paroi
cellulaire tapissant le méat. |
Les parois pectocellulosiques sont détruites par la technique.
Cependant, il peut subsister les parois lignifiées des vaisseaux.
Les images suivantes montrent la proximité du système
vasculaire (conducteur de la sève brute) et le réseau
gazeux.
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Une portion
du moulage d'élastomère en vue longitudinale. |
Une portion du moulage en
vue transversale. |
Conclusion :
Le réseau gazeux d'un échantillon comme l'hypocotyle
de soja constitue bien un continuum important au moins au niveau des
parenchymes cortical et médullaire.
D'autres techniques permettent de visualiser autrement
l'espace gazeux.
Voir aussi :
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