Protocoles expérimentaux
Mutagenèse chez une souche de levure rose ADE 2
Mutagenèse chez une souche de levure rose ADE 2
| 1 - Objectifs |
Objectifs cognitifs
Objectifs techniques
Recommandations importantes sur la sécurité en microbiologie
Faire pousser des levures de bière nest pas un acte dangereux, sinon il y a bien longtemps que nous ne mangerions plus de pain. Cependant, il faut savoir que le milieu utilisé et que les conditions de culture des levures peuvent convenir à dautres microbes moins sympathiques. Or nos élèves sont en situation dapprentissage, ils vont donc effectuer tout à fait normalement des erreurs de manipulation, sources de contamination. Donc il est nécessaire de fermer toutes les boîtes de Pétri après ensemencement et action des ultra-violets à laide de ruban adhésif ou bien de film étirable paraffiné. Après observation des résultats, les boîtes de Pétri sont installées dans des sacs plastiques spéciaux en vente chez nos fournisseurs habituels) supportant la chaleur et passées à lautoclave ou dans la cocotte-minute (20 minutes de rotation de la soupape) pour stérilisation. Ces sacs peuvent être ensuite jetés sans danger dans la poubelle. Je pense quil est important dinformer nos élèves que nous faisons ce travail de destruction afin de les préparer à leur vie dadulte citoyen qui trie ses déchets pour les mettre à la poubelle. Si on souhaite être encore plus rigoureux, il existe des bandes de papier témoin dont une partie change de couleur si le chauffage a été suffisant et qui attestent que la stérilisation est bien faite. On glisse cette bande dans le sac plastique avant de le nouer. Ces bandes sont en vente chez les fournisseurs des sacs. Cest pour nos élèves une bonne formation pratique à la rigueur expérimentale.
| 2 - Le matériel |
Le matériel proposé est celui qui convient à un établissement scolaire ne possédant plus dalimentation de gaz en classe. On peut également prendre des pipettes Pasteur en verre et produire soi-même les rateaux à ensemencer si on dispose de gaz.
- une souche de levure rose ADE2- (1 clone de 1mm en suspension dans 1ml deau stérile).
- des boîtes de Pétri jetables contenant du milieu YPG (voir fiche technique).
- des rateaux à ensemencer jetables sous emballage stérile.
- des pipettes compte-goutte de 1ml jetables sous emballage stérile.
- une hotte à UV (voir fiche technique).
- des couvercles de boîte de Pétri dont un quart a été ôté à laide dun cutter (sous les UV).
- des champs stériles (quelques serviettes jetables ou quelques feuilles de papier ménage enfermées dans une feuille de papier daluminium et passées à létuve sèche à 130°C durant au moins 30 minutes). Entre les feuilles du champ stérile on peut installer des outils stériles sans quils se contaminent. Ils permettent de travailler sans flamme en conditions stériles.
- scotch ou film étirable paraffiné (parafilm par exemple).
- un distributeur de savon liquide.
- une pissette dalcool.
- un produit ménager pour nettoyer les paillasses.
Les masques ne sont pas vraiment nécessaires mais ils peuvent aider les élèves à entrer psychologiquement dans la peau du scientifique qui travaille en conditions stériles. Le mieux est de les jeter après usage mais on peut réutiliser ces masques à condition de les stériliser à létuve sèche.
| 3 - Les activités envisageables pour les élèves |
A - Mettre en culture des levures roses exposées aux radiations ultra-violettes
Lorsquon travaille en conditions stériles, chaque geste doit être anticipé de façon à ne pas se retrouver dans une situation contaminante. Les paillasses ont été lavées et passées à lalcool à laide de papier ménage.
1 - Se désinfecter les mains.
Oter les bagues, laver soigneusement les mains au savon, les passer à lalcool.
2 - Prendre une boîte de Pétri contenant un milieu nutritif pour les levures (YPG). Sans louvrir indiquer sur le côté de la boîte à laide du stylo feutre spécial votre nom et tracer sur le fond de la boîte quatre quarts en inscrivant sur le côté de chacun des secteurs : 0, 30, 45, 80.
3 - Ouvrir lemballage de la pipette stérile . Prélever un peu de suspension de levures après les avoir bien agitées.
4 - Déposer 2 gouttes de suspension de levures au milieu de la boîte de Petri maintenue entrouverte le moins longtemps possible. Remettre la pipette dans le champ stérile.
5 - Etaler les levures avec un rateau de plastique stérile en maintenant le couvercle entrouvert jusquà ce que la surface de la boîte soit sèche (les levures entrent dans la surface dagar, sinon elles coulent lors du déplacement de la boîte et leur répartition nest plus homogène). Toute la surface de la boîte doit être régulièrement "ratissée".
.6 - Transporter la boîte sous la hotte à UV, ôter son couvercle et le remplacer par un couvercle réduit aux 3/4.
7 - Le plastique étant imperméable aux UV, exposer chaque quart.
Le 1/4 noté 30, 30 secondes aux UV.
le 1/4 noté 80, 80 secondes aux UV.
8 - Refermer la boîte avec son couvercle complet, la sortir de la hotte, la scotcher, la porter dans lincubateur à 30°C.
B - Lecture des résultats
Les résultats obtenus peuvent être facilement convertis sous forme de graphes.
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1 - Le quart noté 0 a-t-il été exposé aux UV?
2 - Schématiser les résultats puis les traduire par une phrase.
3 -Proposer des hypothèses expliquant ces résultats.
C - Interprétation de l'effet des ultra-violets sur les levures roses
1 - Observations préliminaires
a - Composition du milieu de croissance des levures : YPG
| Extrait autolytique de levures (Yeast extract) |
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Stériliser 20 minutes à 120°C ou porter à ébullition au four micro-ondes 2 minutes. Couler en boîte de Pétri, laisser sécher les boîtes. Les stocker à lenvers dans un récipient fermé au réfrigérateur si on veut les stocker plus longtemps. |
| peptones (mélange dacides aminés) |
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| Glucose |
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| Agar |
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| eau distillée |
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b - Résultats de lexpérience du TP
Sans traitement aux UV des levures blanches apparaissent spontanément dans la boite
-Le pourcentage de levures roses augmente dans les secteurs soumis aux UV.
c- Comment les radiations UV agissent sur des molécules ?
Les radiations UV véhiculent de lénergie. Lorsquune radiation a une action sur une molécule, elle est absorbée par la molécule. Le résultat de cette absorption est une modification de la molécule par cet apport dénergie. Une molécule modifiée peut perdre ses propriétés.
2 - Le problème scientifique:
Quel mécanisme engendre une augmentation du nombre des clones de levures blanches?
3 - Hypothèses
Notez-les en confrontant celles notées sur votre fiche à celles de lensemble de la classe.
4 - Expérience
On extrait des levures les molécules organiques suivantes : protides, lipides, glucides, ADN.
On mesure expérimentalement lesquelles de ces molécules absorbent le rayonnement UV de 254 hm.
On constate quil sagit de lADN.
CONCLUSIONS GENERALES ?
D - Schéma de synthèse résumant l'effet des UV sur les cellules de levures
En partant du dessin de levure proposé construire un schéma de synthèse montrant leffet des UV sur la souche de levure rose. LADN des levures est réparti en 16 morceaux : les chromosomes de la levure.
| 4 - Fiche technique mutagenèse chez une souche de levure rose ADE 2I |
A - Caractéristiques et mode de culture de la souche utilisée
Il sagit dune souche ADE2- cest-à-dire qui possède un gène défectueux dans la chaîne de biosynthèse de ladénine. Il sagit du gène qui transforme un produit intermédiaire de teinte rose lamino-imidazole ribotide (AIR).
encadré Biologie des levures
Didier Pol.

PRPP : phosphoribosyl
pyrophosphate ; PRA : 5-phosphoribosylamine ; GAR :
glycinamide ribotide ; FGAR : formyl glycinamide ribotide
;
FGAM : formyl glycinamidine ribotide ; AIR : phosphoribosyl
aminoimidazole ; CAIR 5- amino 4- carboxyimidazole ribotide
;
SAICAR : 5-amino 4-succinocarboxyimidazole ribotide ; AICAR
: 5-amino 4-carboxamide imidazole ribotide ;
FAICAR : 5-formamido 4-carboxamide imidazole ribotide
; IMP : inosine monophosphate ; ADS : adénylo
succinate ;
AMP : adénosine monophosphate ; ATP : adénosine
triphosphate.
Cette souche mute spontanément et forme des clones blancs. Il sagit dune mutation reverse cest-à-dire qui ramène la levure à sa situation avant la mutation rose. Le passage aux UV a un effet létal mais augmente aussi le taux de mutation reverse (voir plus loin).
On fait pousser cette souche à 30°C sur un milieu YPG (Yeast, Peptones, Glucose).
Composition du milieu pour un litre de YPG
| Extrait autolytique de levures (Yeast extract) |
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| peptones |
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| glucose |
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| Agar |
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| eau distillée |
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Stériliser 20minutes à 120°C ou porter à ébullition au four micro-ondes 2 minutes. Couler en boîte de Pétri, laisser sécher les boîtes, les stocker à lenvers dans un récipient fermé dans un placard ou au réfrigérateur si on veut les stocker plus longtemps.
B - Les mutations observées
Les effets biologiques des UV sont multiples et complexes. Très souvent lirradiation entraîne la mort des cellules par dénaturation de leurs protéines et apparition de produits toxiques (peroxydes). Cest un effet létal immédiat. Au niveau de lADN, labsorption de lénergie du rayonnement UV provoque parfois la formation de dimères entre thymines adjacentes.Cette liaison anormale déforme la molécule dADN quune nucléase vient localement dégrader à partir du dimère. Une ADN polymérase de réparation resynthétise alors lADN mais elle peut faire des erreurs ce qui entraîne lapparition de mutations. Certaines de ces mutations ne sont pas viables (effet létal). Dautres le seront et augmenteront donc la fréquence dapparition des clones de cellules mutantes. Cest leffet mutagène.
C - Les UV
Lagent mutagène est une lumière ultra-violette de longueur donde 254 hm.
On trouve chez les revendeurs des sources dUV que lon peut installer sous un carton.
On peut aussi fabriquer soi-même une hotte à UV comme nous lavons fait dans notre lycée. Comme lexpérience le montre les matières plastiques sont imperméables auxUV et des petites portes en plexiglass protègent parfaitement des UV et permettent aux élèves de voir ce qui se passe. La partie haute de la boîte en bois protège leurs yeux de léblouissement par la source lumineuse.
D - L'ensemencement des levures
On le fait au râteau en étalant le plus possible 2 gouttes de suspension de levure (tester au préalable sa suspension pour avoir une quantité de clones possible à compter : 1clone d1 mm de diamètre en suspension dans 1ml deau stérile).
Les râteaux peuvent être produits à partir dune pipette Pasteur que lon coude à la flamme. On peut aussi en raison de la disparition progressive des becs Bunsen dans nos établissments scolaires utiliser des râteaux jetables stériles. Il est tout à fait possible de récupérer ces râteaux. On les stérilise au liquide de Milton (stérilisation à froid des biberons) puis on les passe aux UV afin de les stériliser parfaitement avant de les réutiliser. On peut travailler sans bec Bunsen à condition dutiliser un champ stérile : un peu de papier ménage enfermé dans un papier daluminium et passé à létuve sèche durant au moins 30 minutes.
E - Traiter les levures aux UV
On peut passer aux UV une boîte de Pétri entière et comparer les résultats entre les différentes boîtes aux différents temps dexposition. Mais il existe un moyen simple de voir tout sur la même boîte. Il suffit avec une lame de scalpel ou un bon cutter dôter 1/4 de couvercle de boîte de Pétri. Les UV étant arrêtés par le plastique, on expose successivement chaque quart dune même boîte de Pétri durant un temps différent. Les temps dexposition varient selon la puissance des lampes et la distance de celles-ci par rapport aux boîtes.
F - Faire pousser les levures
Installer les boîtes à lenvers dans un incubateur à 30°C. Les boîtes placées à lendroit (couvercle sur le dessus) vont faire de la vapeur deau qui en tombant sur la surface ensemencée va bouleverser les clones.Il faut compter 4 à 5 jours pour que les clones soient bien roses et au bout dune semaine, les résultats sont parfaits pour la lecture. Si on ne dispose pas dincubateur, les levures se développent très bien mais un peu plus lentement à la température des salles de classe.
G - Les résultats observés
a - On observe
1 - Une diminution du nombre des clones (effet létal) au fur et à mesure que lexposition aux UV est plus longue.
2 - Lorsque le nombre des clones diminue, leur diamètre saccroît.
3 - Le pourcentage de clones blancs augmente avec la durée de lexposition aux UV.
b - Pour dénombrer les levures
On dénombre les levures à l'aide dun stylo feutre pour écrire sur les transparents de rétroprojection.
2 cas se présentent :
Cas 1 - Les élèves ont ensemencé régulièrement les levures. Les clones sont répartis de façon à peu près homogène sur toute la boîte.
On dénombre tous les clones présents.
Le dénombrement pose problème pour le quart non exposé aux UV qui présente une forte densité. On procède ainsi. On encercle la surface occupée par 10 clones, puis on la reporte 4 fois à laide du stylo. On obtient alors la surface occupée par 50 clones. On la reporte une fois pour avoir 100 clones . On reporte ainsi la surface de 100 clones jusquà 500 , puis 1000 et ainsi de suite. Le dénombrement est rapide. Pour les secteurs exposés aux UV, on peut reconduire la même méthode ou compter le nombre exact.
Cas 2 - Les élèves ont mal étalé les levures et les bords de la boîte par exemple sont totalement dépourvus de levures. Les quarts se chevauchent un peu, les élèves ayant mal ajusté le couvercle évidé lors du passage aux UV.
On dénombre les clones contenus dans plusieurs petites surfaces échantillon.
Pour cela on produit un cache en plastique transparent percé dun trou carré de 1cm de côté. Le carré plastique évidé sur 1cm2 de surface est installé sur une zone à densité moyenne caractéristique du quart considéré. Le nombre de clones visibles dans le carré est dénombré. Pour les clones à cheval sur la limite, ils comptent pour un demi-clone. On peut poser le carré sur trois endroits et calculer une moyenne.
Jai obtenu ainsi les résultats suivants:
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Le "truc" pour réussir
Les levures ne doivent pas être ensemencées avec une trop grande densité. Sinon, on obtient des tapis tout blancs et on ne peut pas dénombrer les clones car ils ne sont plus isolables.
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